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原帖由 guting2006 于 2012-1-11 20:33 发表

谢谢,shanghainese 老师。我得配个试试。冰剩没有冻过,也会有结晶?那怎么解冻不会产生冰结晶呢?  
是在化冻的时候产生的。医院图书馆里有一本书叫组织化学,里面有一节专门讲冰冻,有时间可以看一看。

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按照我们的传统,冰剩组织做石蜡切片,只作为参考。因为历来冰剩组织做石蜡切片的组织形态都很差。要解决这个问题不是不可以,只是要花代价。问题是值不值得做。

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shanghainese老师,您好啊!您有可能前面没有看清楚,我说的“冰剩”是没有做过冰冻的组织。

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原帖由 guting2006 于 2012-1-12 16:58 发表
shanghainese老师,您好啊!您有可能前面没有看清楚,我说的“冰剩”是没有做过冰冻的组织。
送检冰冻组织在冰冻取材之后剩余组织访在福尔马林里固定。以前一直没有都没有问题。

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更正: 送检冰冻组织在冰冻取材之后剩余组织访在福尔马林里固定。以前一直都没有问题。

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您低浓度酒精脱水时间要3小时?是否太长?低浓度酒精对细胞冲击力很大的,浸泡时间太长可能会引起细胞肿胀导致细胞形态破坏。染色时分化很重要,另外最好用透明剂湿封片。切片时尽量切薄一些,单看机器调没用,还要凭肉眼判断是否切得过厚。

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原帖由 王花咪 于 2012-3-21 22:04 发表
您低浓度酒精脱水时间要3小时?是否太长?低浓度酒精对细胞冲击力很大的,浸泡时间太长可能会引起细胞肿胀导致细胞形态破坏。染色时分化很重要,另外最好用透明剂湿封片。切片时尽量切薄一些,单看机器调没用,还要凭 ...
这个说法是错误的。如果固定好的标本,低浓度酒精时间长,对组织的处理和形态都好。当然浸泡过长:如几个月或几年,那另当别论。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

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原帖由 dingwei 于 2012-3-22 15:34 发表
这个说法是错误的。如果固定好的标本,低浓度酒精时间长,对组织的处理和形态都好。当然浸泡过长:如几个月或几年,那另当别论。
那如果固定不好的标本,低浓度酒精时间长的话,会产生什么影响吗?谢谢丁老师

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我们以前LN也出现过这样的问题,后来不断改进,现在略微有改变
1、LN剖开固定过夜;2、第二缸脱水换成酒精福尔马林溶液;3、切片2MM够了,捞片多捞几张,便于做比较。苏木素深染,分化要足够。
经验之谈,希望能帮到你。

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淋巴结和淋巴瘤的,你试试用抗原修复后再染HE。

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