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免疫组化设置对照试验

免疫组化设置对照试验

今天看到了这个,贴在这里共大家参考,请大家帮忙分析,临床病理免疫组化,必须要设置什么对照试验
一、阳性对照
用已证实含用待测抗原的组织,与待检标本做同样处理后,进行免疫组化染色,结果应为阳性,称为阳性对照。每次实验都应做阳性对照,通过阳性对照可证明靶抗原有一定活性,染色过程中各个步骤以及所用的试剂都合乎标准,染色方法可靠。特别是当待检的标本为阴性结果时,阳性对照呈阳性反应,可排除待检标本假阳性的可能。所以若预期染色结果是阴性时,就必须设阳性对照。
二、阴性对照
用确知不存在待检抗原的组织切片染色,结果为阴性。阴性对照可证实组织内若不含靶抗原,就不应染色,可排除在染色过程中由于非特异性染色或交叉反应等因素造成的假阳性结果。
三、空白对照
是最常用的对照,用不加一抗的缓冲液,如PBS替代一抗,染色结果应为阴性,说明染色方法可靠,可排除组织的内源性过氧化物酶、碱性磷酸酶、自发荧光等物质引起的非特异性显色。
四、替代对照
用与第一抗体来源的同一动物免疫前血清,如第一抗体用的是兔抗人GFAPIgG抗体,对照中用非免疫性的正常IgG血清来替代一抗,以相同的稀释倍数进行对照染色。这可证明待检切片中阳性结果不是抗体以外混杂的血清成分所致,而是所用特异性抗体与组织细胞内待检抗原的特异性反应的结果。但使用的商品抗体往往不能用同一种动物的免疫前血清做替代对照,也可用未经免疫的同种动物血清,即非免疫血清替代一抗。
五、吸收试验对照
用过量已知相应的纯化抗原与第一抗体反应,抗体结合点全部被抗原结合,这种被抗原吸收的抗体不能再与组织内的抗原反应,故再做免疫组化染色时,结果应为阴性。
六、自身对照
用同一组织切片上与待检抗原无关的其它结构做对照。阴性反应与阴性结构同在一个视野中,相互印证,这本身就是对阳性反应的特异性对照。但进行科研工作中,单纯用这种对照是不科学的。必须增加如空白对照、替代对照等,才能使染色结果得到承认。现代国际上发表文章,一般在免疫组化染色的同时,还须有Western blotting做相应蛋白质检测的实验结果加以证实。

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1、阳性对照是必须的。
2、阴性对照不是很有必要,你不可能做的片子所有片子整片都是阳性的。
3、如果你是用非生物素二抗,就没必要做空白对照。
4、替代对照, 吸收试验对照不做。
5、自身对照是组织内本身有的,阳性就明你的操作是正确的。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

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谢谢丁老师的解答

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免疫组化每一个抗体每次都做阳性对照?

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从质量控制角度是这样的,但我们现在做不到。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

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对,理论是这样,但是实际不然!
(本观点纯属本人意见!仅供参考!)

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理论是这样,实际也是这样。只是我们都很随意,真有问题也发现不了。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

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引用:
原帖由 dingwei 于 2011-8-29 10:07 发表
理论是这样,实际也是这样。只是我们都很随意,真有问题也发现不了。

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是否包括抑制对照。

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请教以下网站回答正确否:http://www.med66.com/html/ziliao/yixue/6/d10cd8e113ac42d56c6841377e2c82dd.htm免疫组化染色中的对照片的设置非常重要,它是判断您的染色是否成功的关键依据,而且也是检测每一个抗体的质量标准,常设的对照如下:自身对照、阴性对照(空白对照、替代对照、抑制对照、 吸收实验对照)、阳性对照。
A、自身对照:在同一切片上与检测的目的物对照比较。如Actin、CD34在正常组织中的血管壁肌层应为阳性,Vimentin可以间质细胞,Desmin以血管壁及肌束为对照,S-100以小神经末为对照等,如果应为阳性的组织是阳性,则技术操作正确,如为阴性,则表明技术或免疫试剂质量有问题。
B、空白对照:用缓冲液替代一抗。
C、替代对照:用非免疫血清替代一抗。
D、抑制对照:使用与一抗相同的非标记抗体稀释特异性一抗,适于直接法。
E、吸收实验对照:已知抗原与相应的第一抗体混合,发生结合沉淀,再用此沉淀抗体复合物进行免疫组化实验,结果为阴性。
F、阳性对照:用以含有靶抗原的切片进行对照。

[ 本帖最后由 lzhgt 于 2012-4-16 13:56 编辑 ]

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