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求助!!!希望老师们给我帮助,愁死了

回复 49# 的帖子

不是说现在不太赞成水洗了吗?好多人都不水洗,我12缸都用上了

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那是你觉得的解决问题,所有的片子都按照我的方法切会出现问题吗?你所说的脱水方法可能只适用你们医院,别的医院可能有20个小时的脱水时间吗?不是你说的的 所有人都适用的,技术员如果连变通都不会也就只能按照套路来做了。
引用:
原帖由 dingwei 于 2012-12-11 08:24 发表
所以说你没有从根本上解决问题,只是采用了不是很冰的方法,减少了碎的问题,这只是一个应急的方法,不能解决所有的问题,真正解决问题只有把组织块处理好。

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引用:
原帖由 wxhwxh 于 2012-12-12 09:10 发表
不是说现在不太赞成水洗了吗?好多人都不水洗,我12缸都用上了
我们也是兰卡12缸 就是固定好后再取材直接扔进低度酒精里了!

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回复 32# 的帖子

丁老师,你说“中性甲醛后需要水洗。主要是可以防脱片和抗原的长期保存。”   但是  您的脱水机程序中并未有水洗这一步啊
还有一个问题请教您:我们的小组织取材时染上伊红,发现在脱水机中的中性福尔马林中,就被洗掉了。。。包埋时,仍然不好找小组织。。。需要做什么改进呢?

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丁老师,你说“中性甲醛后需要水洗。主要是可以防脱片和抗原的长期保存。”   但是  您的脱水机程序中并未有水洗这一步啊
还有一个问题请教您:我们的小组织取材时染上伊红,发现在脱水机中的中性福尔马林中,就被洗掉了。。。包埋时,仍然不好找小组织。。。需要做什么改进呢?
引用:
原帖由 dingwei 于 2012-11-30 21:08 发表
我们设定的lica  asp300 脱水机  程序
中性甲醛 4h ,75酒精2h , 85酒精2h ,95酒精2h   95酒精2h  无水酒精1.5h, 无水酒精2h,二甲苯45min*2,
蜡15分钟,蜡30分钟,蜡1.5h    蜡稳定62度   大小组织在一块脱水 ...

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丁老师说脱水没有脱过一说,学习了,但是请教一下,要是透明二甲苯放的时间太长,有没有变脆的说法呢?

以为是旧帖,看了一下时间,新帖啊,顶一个。我是干诊断地,外行啊。

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1,我来稍微讲下,为了让小组织看清要放伊红,是在脱水程序最后一道酒精里放少许,我们是莱卡300S的,放大概绿豆大小的伊红。
2,关于第一道的固定液后放水的问题,以前也放过,现在我也不放,在后面的低浓度酒精换的勤点,也会有会较少后面几缸甲醛的含量。(其实在取材之前很多标本已经是固定的不错,除了部分的大肿瘤标本,其实也是送来的时候要切开)。
3关于标本的处理好坏和后期切片的一些手法方面的问题,首先,处理不好的组织标本肯定是会有各种方面的切片困难的发生,不光光是碎的问题,所以组织本身一定要处理好,其次在组织没有处理好的情况下,作为应急手段,让切片更好切,切出来更完美些的的手段很多,各个地方的方法也是稀奇古怪,千变万化的,只要是能让片子好切,切的完整就可以,但是不要忘了,只是一个肉眼下的切片完整手段,对于切片镜下的质量是否有保证,那还是要前期的标本完好的处理,不然要么核不清,组织收缩或是膨胀,或是碎碎的等等问题,组织处理是前提,在反过来,处理很好的组织,在切片不到位等等原因,也是会让片子在镜下难以入目的,啰啰嗦嗦一堆,总结下:前期的组织处理和后期的制作都是需要一名技术员的精心呵护。
为人民服务

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跪求···

老师们:这两年来制片一直有问题,比如说:小活检组织有裂隙,我观察了一下组织外围最明显,组织中央就还好,我们一直在找原因,曾经以为是用了17年的老式切片机有问题,现在更换了莱卡2245新机器后也没有得到改善,所以开始从脱水机中找原因。
我从浸蜡开始找原因,我设定的温度在65,用温度计一测70多度,吓一跳,对于国产的东西不放心,继续去包埋机中测量,一看吓一跳70度呀,又是温控不准。(70度的浸蜡对组织影响大吗?会照成组织的裂隙吗?)我现在在做试验,将温度下调:比如脱水机调整到60度,测量后在65度左右。
我们的脱水流程是:
1.中性甲醛2小时
2.中性甲醛1小时40分钟
3.60%乙醇40分钟
4.95%乙醇1小时
5.95%乙醇1小时
6.100%乙醇1小时30分钟
7.100%乙醇1小时30分钟
8.二甲苯1小时30分钟
9.二甲苯1小时45分钟
10.石蜡45分钟
11.石蜡45分钟
12.1小时。
我们一个星期110-250个蜡块之间,一个星期换一处脱水机液体:如二甲苯一瓶、无水乙醇一瓶、中性甲醛500ml,所有液体往前移动,我自认为我的液体已经换得够勤密了,但是出来的片子依旧不理想。
各位亲们、老师们帮我指点下迷津,有什么地方要改进的呢。

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好像找到原因了

我们的胃镜小活检的标本出现明显裂隙,我跟医生研究了一下应该是固定液溶度过高,固定时间过久而产生的。
这两天做实验,用胆囊黏膜更换脱水步骤及脱水液,均无明显的裂隙,只有极少数的裂隙。但是胃的活检裂隙超明显,想起来胃活检的固定液是消化内科配制的,而且有个标本在固定液停留了三四天裂隙就蛮明显的、完全无法看。于是我明白了,他们浓度没有掌握好,甚至是原液······我这样的推断对吗?
固定液浓度过高,时间过长使标本出现裂隙?

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回复55#
我们也是在小组织取材时滴染上伊红,有一段时间也是脱水后伊红就被洗掉了,后来配制醇溶性的伊红,每1000ml伊红加冰醋酸15ml,效果挺好。你可以试试噢

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