返回首页 | 病理技术专题 | 病理资讯 | 病理图库 | 病理技术精英 | 同行交流 | 技术会诊 | 点滴经验 | 常规切片 | 特殊染色 | 分子免疫 | 细胞园地 | 电镜技术 | 收藏本站
 21 123
发新话题
打印

胸腹水细胞学制作

胸腹水细胞学制作

前一段时间听了干细胞老师的课,把他的胸腹水细胞学制作经验在这里给大家分享,叙述的可能不是太完整,有不当之处请大家指出。
1.把标本静置沉淀后倾去上方液体。
2.剩下的标本离心。
3.倾去离心管中的液体,用棉棒轻刮试管底部沉淀物(血块上方)。
4.在干净的玻片上涂片,稍晾(玻片上的水分稍干,但不能干片)入92%酒精固定。
5.染色。
:em15:  :em25:  :em24:  :em23:

TOP

胸腹水细胞学制作

我的方法是:
1.把标本静置沉淀后倾去上方液体。
2.剩下的标本离心。
3.倾去离心管中的液体,用卫生纸吸去试管口的水分。
4.用吸管吸取试管底部沉淀物。在干净的玻片上涂片,立即放入92%酒精固定。

TOP

胸腹水细胞学制作

    两位老师的好方法我都用过,感觉细胞量多时用棉签轻印在玻片上分布更均匀一些,细胞量不多时没什么区别。

TOP

胸腹水细胞学制作

请问丁老师:你说的方法涂完片子直接固定,那样的话细胞不会脱落吗?我一般都是干燥一会。另外我有时候涂的片子后了的话我喜欢再推个片子,这样片子薄一些也好看,不知道这样有影响吗?

TOP

胸腹水细胞学制作

只要你离心后吸干管内的水份,涂出的片子立即固定就不会脱落。

TOP

胸腹水细胞学制作

固定多长时间为好?

TOP

胸腹水细胞学制作

我想请问一下前辈们,胸腹水细胞学的时候,我经常会遇到一些离心后试管里有很多血液,或者有时候蛋白很多,这样涂片很不方便,有什么办法可以除去这些血液或者蛋白呢???有时候送检来的标本本身已经凝结了,液体不容易倒出来,请问一下高手们,你们是用什么办法处理那些已经凝结的液体的??怎么样才能够防止液体凝结呢???希望前辈们指点一下!

TOP

胸腹水细胞学制作

红细胞可以加等量蒸流水离心,取沉渣,就可以破坏红细胞

TOP

胸腹水细胞学制作

怎么是管底的???
我们老师说是上方清凉液体和下面沉淀之间的那层白色的东西

TOP

胸腹水细胞学制作

我想请问各位老师,此类的片子要不要作为档案片保存?谢谢

TOP

 21 123
发新话题