这篇文章有关脱水的观点我自己有了新的认识：
所谓脱水就是利用脱水剂将组织内的水分置换出来，以利于有机溶剂的渗入，这一过程称为脱水。脱水是否彻底，直接关系到组织是否能充分透明。一般我们总认为脱水主要跟高浓度酒精有关，而忽视了与低浓度的酒精关系，其实75-80%浓度的酒精具有极强的穿透力，在短时间内可以置换出大量的水份，而高酒精容易使蛋白质凝固，在组织的表面形成一层硬壳，使酒精难以渗透到组织块中间去，导致组织脱水不佳；其实高浓度酒精里只需脱去从低浓度到高浓度之间的水份，如果脱水时加温过高（超过35-50℃），使用丙酮等等，都容易导致组织收缩过度和组织发硬、发脆。组织脱水引起的组织发脆有三种原因：一种是初始脱水液浓度过高引起组织质地发生改变；第二种是组织本身质地有关，如小动物肝脏，第三种是假脆（也是组织发脆最主要原因），是由于的脱水不足，组织在浸蜡时蜡无法渗透到组织中去，组织在高温下“干烤”导致发硬、发脆，切片会出现粉粉的或一丝丝的现象，子宫肌瘤等较硬的组织还会一棱棱的现象，甚至会整块整块往外崩；严重脱水不足的组织中间发软，甚至还会有水。
脱水的关键是如何使低浓度的酒精脱水时间和高浓度的酒精脱水时间的正确搭配，低浓度的酒精可以使组织收缩减少，并使组织更好切，高浓度的酒精使组织脱水更彻底。一般情况下，标本脱水时间（35℃）以75％酒精1.5小时,85％酒精2小时、95％酒精（2道大）各1个半小时至2小时、纯酒精（2道）各1个半小时至2小时。小标本脱水时间与大标本差异不大，一般没必要分开，小标本发脆，往往是因为纸包太厚或相互粘在一起，导致组织脱水不彻底引起。如果由于时间关系，也可适当相应缩短。脱水时间长短，与室温高低有密切的相关,同时也与组织的厚薄，组织类型，组织固定的程度等条件都有关。我们在实践中发现，室温在12～15℃时，可作为一个临界温度范围。当室温高于此温度范围时，组织容易脱水，可适当缩短脱水时间；而室温低于该温度范围时，应适当延长脱水时间。从规范化角度出发，应该尽可能的减少变量，也就是：温度、浓度和作用时间。如果一年四季都在一个恒定的温度下（35℃）最好，有条件的应该买全封闭自动脱水机。更换脱水液，应以量为基础，定量更换。根据我科经验，如试剂用量为500ml，每500个蜡块更换一次为宜。在更换脱水液时，不提倡全部试剂向前退的方法，因为此法不能保证低浓度的酒精的浓度（往往会偏高），所以我们认为85%的酒精不能退到75%的酒精里，95%的酒精不能退到85%的酒精里，无水酒精不能退到95%的酒精里，而第二道的95%的酒精可以退到第一道95%的酒精里，第二道无水酒精也可以退到第一道无水酒精里（如果纯酒精要退到95%酒精里，可用比重计测量，加水或加纯酒精）。要保证各梯度酒精的真正浓度。只有这样才能做好每一批组织。常规切片脱水的原则就是在最短的时间内，使组织脱水彻底，收缩度、硬度适中，切片舒展、好切。
