个人意见：由图片大致推断组织脱水和染色过程存在几个问题。
1、脱水不足引起细胞组织收缩明显，组织发脆，切片时极其容易出现小裂纹。
很多人对脱水有一个误区：组织发脆发硬就是脱水过度，其实不然。
组织在酒精脱水时不足导致水分残留在组织里，二甲苯不能充分进入组织，在浸蜡过程中蜡也不能充分进入组织，蜡缸温度60度，对组织形成“干烤效应”，组织收缩变硬变脆。胃镜小组织用绵纸包着，非常影响脱水时液体交换，非常影响脱水效果。（丁伟老师有做过实验，也在会议上做过发言的！）
在病理科赶着脱水，赶着发报告的大环境下，组织脱水过头是不容易发生的，组织固定脱水不足才是经常发生的事！
脱水的酒精不建议使用无水乙醇大循环换液模式，推荐使用梯度浓度小循环换液模式：酒精缸分三组（①65%②75%）（③85%④95%）（⑤100%⑥100%）换液时组内第一缸倒掉，第二缸的试剂可以前移变第一缸，按组内的浓度梯度更新酒精。酒精不能跨组前移。
2、酒精缸的时间要够，包了绵纸的小组织就不能当小组织，当成大组织一样处理脱水就没有问题了。
3、蜡缸的蜡要定期及时更换，包埋时组织二甲苯味道太浓，不是浸蜡缸中的蜡太久没换就是浸蜡时间不够。
4、染色不均匀的问题要在两个方面找原因：（1）可能原因脱蜡不干净、二甲苯没脱干净导致染色不均匀。冬天气温冷，溶解速度缓慢，也有可能是试剂太久没换。（2）伊红上色不均，返蓝之后水洗时间太短，返蓝液残留，组织对伊红拒染。
个人观点，仅供参考！
[ 本帖最后由 王华 于 2013-9-15 21:12 编辑 ]
