返回首页 | 病理技术专题 | 病理资讯 | 病理图库 | 病理技术精英 | 同行交流 | 技术会诊 | 点滴经验 | 常规切片 | 特殊染色 | 分子免疫 | 细胞园地 | 电镜技术 | 收藏本站
 11 12
发新话题
打印

紧急求助!请各位老师帮帮我!

紧急求助!请各位老师帮帮我!

各位老师好,由于实验需要进行大鼠股骨标本的HE和免疫组化染色,首先需要进行的是骨标本脱钙。我现在使用的是10%的EDTA脱钙的方法(常温),请教几个问题:
1.使用EDTA脱钙的方法脱钙,应该常温放置或者4℃放置(另有人说在37℃或用微波可加快脱钙速度,不知道会不会影响抗原)?
2.大概需要多长时间可以脱钙完全?如何进行判断(我的组织已经脱了3个月了,感觉是软了,但是还是不能用大头针很轻易的刺穿,是不是脱钙仍不够啊)?
3.之前找公司用硝酸脱钙的方法染了几张HE的片子,整体感觉还行,但是发现脂肪细胞被破坏殆尽了(公司解释说是酒精脱水的时候被溶解了),看国外文献中的HE片子脂肪细胞可以很好的保存,不知道有什么办法可以不破坏脂肪细胞呢?
       请各位老师不吝赐教,先谢过了!

TOP

1、首先用锯子把股骨锯成1-2MM厚的小骨片,否则你脱半年也脱不了。
2、每天更换EDTA脱钙液。
3、一般不加温,加温对免疫组化有没有影响不知道,没做过对照。
4、HE切片应该只留下脂肪细胞的支架,脂滴肯定会被溶解。国外文献中的HE片子脂肪细胞可以很好的保存,不知道是什么保存,如果说连脂还在,那肯定不对。
5、如果用EDTA脱钙比较慢,可以用10%盐酸福马林液试一下。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

TOP

谢谢丁老师的指点!但是大鼠的股骨本来厚度就不大(大概有3-4mm左右),很难再锯开了吧,而且一旦锯开之后,骨髓腔中的骨髓估计也就没了,所以就直接放进了脱钙液中了。还请教您几个问题:1.像我这种情况,组织在脱钙液中浸泡太久,对组织结构和抗原影响大不大?2.您提到的10%盐酸福马林液脱钙之后,会不会影响到后期做免疫组化啊?3.如果10%盐酸福马林液影响不大的话,我现在的组织可不可以转而使用此种方法脱钙?期间需要用流水冲洗将附着的EDTA冲干净吗(冲洗时间)?4.在首页看到的10%盐酸福马林液的配方是:40%的甲醛5ml,浓盐酸10ml,蒸馏水85ml。我现在的组织还需要再加甲醛进去固定吗,是不是要减掉甲醛的成分(手头也只有4%的多聚甲醛,应该如何配置)?5.用盐酸脱钙,大概得多久脱完全,脱钙终点如何判断(细针穿入?)?脱钙后,流水冲洗时间多久?6.脱水透明的步骤,这是我之前用的步骤,您看这样可以吗? 75%乙醇 3-5 h,85%乙醇4h,95%乙醇(I)2h,95%乙醇(II)2h,100%乙醇(I)1h20min,100%乙醇(II)1h40min;正丁醇(I)2.5h,正丁醇(II)25h;石蜡(I)0.5h,石蜡(II)1.5h。
        我是个新手,问题有点多,呵呵,希望能得到您的指点,谢谢!

[ 本帖最后由 ddmhjl 于 2010-10-27 18:58 编辑 ]

TOP

各位老师我是为新手,我想问一下我用冷却配法苏木精。为什么不愿上颜色,这是我第一次用这种方法配的

TOP

1.像我这种情况,组织在脱钙液中浸泡时间越久,对抗原影响越大。
2.10%盐酸福马林液脱钙之后,会不会影响到你要做的免疫组化。不清楚,有的抗原有影响,有的没有影响。你的实验设计本身就不科学,安理你应该做好预试验后才开始正式实验,否则你怎么知道你那个方法是可行的?
3.可用流水冲洗将附着的EDTA冲干净,再用10%盐酸福马林液。
4.可以遥10%盐酸福马林液,如果要快的话,还可以用的30%。手头有4%的多聚甲醛,就别加了,按理应该先固定再脱钙。
5.用盐酸脱钙,时间也不清楚,能用细针穿入即可,脱钙后,流水冲洗时间4-6小时。
6.脱水透明的步骤可能。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

TOP

谢谢丁老师!还要请问您两个问题。1.我测定的蛋白有BMP-2、TGF-b1和FGF-2,您做过这几个用盐酸脱钙的实验吗,影响大不大?2.如果脱水、透明、包蜡后发现脱钙仍不够,有什么办法处理组织,使之能继续进行脱钙吗?

TOP

1、没做过
2、可以,把蜡块切面放酸里泡
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

TOP

谢谢丁老师!

TOP

还要请教丁老师,10%的甲酸和盐酸比较,哪个效果更好些(对组织损伤小,免疫组化和HE染色较好)?

TOP

不清楚,你可以试一下。
本人观点纯属个人偏见,希望大家独立判断,正确引用!

TOP

 11 12
发新话题