与丁伟老师谈谈全国冰冻切片比赛的一些小感想
我是个不太喜欢上网的人，主要是要干的活很多，要学的东西也很多，所以上网都是下班后在科室上，下班回到家就安心的看书，我家没装电视没装网线（自己自制力不够好，为了减少**，只能出此下策啦！），科室的研究生给我起了一个绰号“文明原始人”，呵呵.....
周六来科室值班就上网看看，看到丁老师关于全国冰冻切片比赛的帖子，有些小感想，就和丁老师好好聊聊啦！我的一些观点不是很成熟，丁老师别取笑哦！
丁老师真是“火眼金睛”啊！比赛时，为了快速冷冻组织、利于切片，我的组织的确是在冷冻的过程中翻转过来压了一下。丁老师说的风险的确存在，不过只要掌握好时机也能确保无虞。我的小“伎俩”是：组织托放在冻台上预冻后先加一小层胶，待胶的下1/3变白时将组织放上（放上之前组织要用滤纸吸干游离的水分，很重要），在组织周围再补一些胶，等胶与组织的下2/3变白但表面尚透明时及时将托翻转5秒后再正转过来，翻转时不能用力压，要保持组织的自然结构。经过这样处理，组织冷得快，翻转时也不会有掉下来的危险！丁老师说我的组织很大，呈圆形可能是压出来的，其实也不算是啦！我得到的那块肝组织的确是超级大，估计是不是我最后一个操作，取材的老师额外的照顾我啦？！
因为比赛时冰冻切片机的温度是不能随意调节的，为了切好肝组织，我的切片顺序是肝—肾—肠，在肝组织没完全冻透时就开始粗刨，待到切片时肝组织的温度还不是太低，所以切片很顺利。如果组织太冷，用手去捂，可以解决裂纹的问题但组织在一冷一热的作用下，细微的组织结构会受到很大影响！
关于组织掉片的问题，我平时做冰冻切片时软组织从来不会出现掉片的，但在比赛时其中一片肝组织切片居然掉了4/5，还好另一张只有轻微的掉片，真是万幸啊！个人分析原因：玻片表面不够光洁。这样说话，估计玻片供应商可能会很有意见。声明：仅为个人意见哦！
冰冻切片比赛中一个很重要的问题：选手们选用的冰冻固定剂是影响切片染色质量的重要制约原因。冰冻固定液需要改良啦！我在比赛时使用的是改良型Bouin固定液（我科平时也用该固定液，比赛前我们要求大会提前配好的）。固定液直接影响切片染色的好坏，当然规范的操作也很重要，但固定液不理想，切得再好也染不出好效果的！改良型Bouin固定液（苦味酸75％酒精饱和液75ml，甲醛溶液10ml，丙酮10ml，冰醋酸5ml，醋酸钠1克混合）。
这反映出目前我们病理技术需要解决的问题：加强基础知识的再学习！什么是病理技术的基础知识？是各种有关病理技术的专业书籍吗？远远不够！是基础化学，基础有机化学，染料化学、生物化学，分子生物学，病理学、组织学、甚至包括量子物理学和哲学等等！医学版的基础化学、基础有机化学是不够用的，要好好看看理工科版本的化学教科书。我们在本科学过的化学知识基本上都还给老师啦！病理技术工作者没有坚实的理论基础如何形成发散性思维？如何有创新性灵感？如何形成精准的直觉？再学习不光是为了巩固基础理论，更重要的是要跟上科技发展的步伐，让相关学科的先进知识能与病理技术产生新的“交汇点”，加快病理技术的发展。病理技术工作者不光要善于观察眼睛看的到的事物，更重要的是要能体会眼睛看不到的东西！病理技术工作任重而道远啊！呵呵......这是我对病理技术“理论架构”的个人理解，您别取笑哦！
对丁老师发的几张照片的一些个人见解：
冰脆1：肝细胞核中间，胞浆出现空泡样间隙，估计是组织冻得太冷，切片时用手捂过切下的第一张切片。一冷一热就造成了细胞结构的改变。丁老师说的改变冷冻温度是最好的方法！但如果不能改变温度的情况下，用手捂过之后，弃去3~5张切片再贴片可以改善此类状况。
冰晶多（细胞间）：个人认为那不是冰晶，而是使用了AFA或AF固定液或其他的脱水效果强大的固定液而导致的肝细胞收缩，肝索脱水变细导致肝窦增宽。
我们对经常使用的“冰晶”一词会不会是有所误解呢？
我还是一个刚刚上路的新手，以上只是我的一些小小见解，说的不对请丁老师多多包涵啊！
