免疫组化组织细胞的取材
从大体标本上切除适量的组织材料进行研究就是取材。取材不仅在免疫组化而且在常规病理检查中也十分重要。用于免疫组化的组织一般取材大小为1．OcmXl．OcmX0．2cra。取材时应剔除脂肪和钙化，否则会影响切片，出现假阳性或假阴性结果。
组织标本包括动物标本、手术活检标本、尸体解剖标本及细胞标本等，有关各种标本的取材方法分述如下。
一、动物的致死法及取材
(一)致死法
(1)空气栓塞法 向动物静脉内注入一定量的空气，使动物很快死亡。一般适用大动物，例如兔、犬、猫等动物。
(2)麻醉法 可将浸有乙醚或氯仿(三氯甲烷)的棉球连同动物一起放人密闭容器内进行麻醉，也可用4％戊巴比妥作静脉注射，或用20％氨基甲酸乙酯做腹腔注射。适用于鼠等小动物。
(3)断头法 用剪刀剪去动物的头部，待血液流出后立即取材。适用于小动物。
(4)去头法 用重物猛击头后部或将动物头后部猛撞桌沿。
(5)股动脉放血法 动物麻醉后，切开股动脉放血致死。
(二)取材注意事项
(1)
最好在动物心脏还在跳动时立即取材，并迅速投入环保组织固定液内。脏器的上皮组织易变质，争取在死后半小时内取材完毕，否则免疫组化染色时会产生背景染色。
(2)切取组织使用的刀、剪要求锋利，避免来回挫动组织。因动物组织质脆，因此夹取组织时切勿 用力过重，以免挤压损伤组织。
二、尸体解剖的取材
尸体解剖的取材应根据实际需要进行，一般取材部位和数量如下。
(1)心和大血管 右心室一块，左心室一块，主动脉一块，取材部位可在距主动脉瓣5cm处。
(2)肺 右下叶一块，切成正方形；左下叶一块，可切成长方形。
(3)肝 右叶一块，切成正方形；左叶一块，切成长方形。
(3)脾 一块。
(4)胰 一块。
(6)肾 两肾各一块，包括皮质、髓质和肾盂。右肾一块切成正方形，左肾一块切成长
(7)膀胱 一块。
(8)肾上腺 左、右各取一块。
(9)消化道 食管一块，胃窦部一块，小肠一块，淋巴结一块，直肠一块。
(10)骨 脊椎骨一块。
(11)胸腺 一块。
(12)子宫 宫颈和宫体数块。
(13)睾丸或卵巢 各一块。
(14)脑 左侧运动区一块，左侧豆状核一块，小脑一块。
(15)脑下垂体 一块，前叶或包括前后叶。
如有较严重或复杂病变时应适当增加取材数量，以便彻底检查而作出正确诊断。
三、活检标本的取材
(一)常规活检标本的取材
应注意病变的部位、形状、大小、颜色以及与周围组织的界限，有无完整的包膜。取材时应取病变部位、病变的切缘、病变与正常组织交界处以及远离病灶的正常组织。取材用的刀剪应锋利，避免挤压组织；组织的切面应平整，组织切忌过大、过厚，否则不仅浪费试剂，而且会造成固定、脱水不良而影响镜下观察。
(二)肾穿刺标本的取材
进行穿刺取得组织后，立即用生理盐水或PBS冲洗数次去除血迹，并迅速判断所穿组织是否为肾组织(肾组织应为暗红色)。当确定为肾组织后，立即将组织置于木板上，迅速测量其长度；用解剖显微镜或放大镜进行观察，以区别皮质和髓质，并观察标本是否有肾小球。在解剖显微镜下，肾皮质较淡，皮质区可见一些分布不规则、朦胧的红色小点，此即为肾小球。使用解剖显微镜可帮助区别组织，作出准确的判断，使肾活检可靠。穿刺所取得的标本用手术刀片切开，并迅速固定，一半放人装有光镜固定液的青霉素小瓶内，另一半放人装有电镜固定液的小瓶内，均置于冰瓶内保存。
(三)小标本的活检取材
小标本常见为宫颈、宫内膜、鼻咽、口腔、喉以及各种内窥镜所取得的组织。它们体积较小，因此取材时要用擦镜纸包起来再进行固定、脱水，
特别是由胃镜、肠镜等所取的组织，取材时一定要滴上伊红，以防止丢失。活检组织多用活检钳夹取，常因过度挤压而变形。病灶表面有出血坏死，活检时难于采取到深部组织。因此，活检钳的刀口必须锋利，活检时必须采取主要病灶区，尽量避开坏死区。
