做细胞培养的组化有两种情况：
一是悬浮细胞培养后如果想做免疫组化，就要把细胞甩在载玻片上，（专门有这种甩片用的离心机）晾干之后固定，其中固定液可以用PFA，或者丙酮，固定在室温或者4度都可以，10～15分钟。之后就可以按照常规组化染色的程序进行下面的实验了。需要注意的是：甩片之前要用PBS把细胞洗两次，然后记一下细胞数，可以试几个细胞浓度，在镜下观察，以单层平铺细胞为宜。找到合适的浓度后再制备实验用的甩片样品。
二是贴壁细胞需要做免疫组化时，可以在培养皿里放入盖玻片，让细胞长在上面后，在取出来进行实验。需要注意的是：取出培养好细胞的盖玻片后，PBS洗两次后，室温晾干用PFA或丙酮室温或4度固定都可以，10～15分钟。之后可按组化常规方法进行。封片时将有细胞的面向下盖在载玻片上即可。
另外，用丙酮固定细胞的同时即对细胞膜进行了打孔的步骤，如果用PFA进行固定，则需要再使用打孔剂打孔（细胞内表达）。使用过氧化氢去除内源性过氧化物酶时，细胞要比石蜡切片的组织反应强烈，偶尔会掉片。
