个人意见:由图片大致推断组织脱水和染色过程存在几个问题。
1、脱水不足引起细胞组织收缩明显,组织发脆,切片时极其容易出现小裂纹。
很多人对脱水有一个误区:组织发脆发硬就是脱水过度,其实不然。
组织在酒精脱水时不足导致水分残留在组织里,二甲苯不能充分进入组织,在浸蜡过程中蜡也不能充分进入组织,蜡缸温度60度,对组织形成“干烤效应”,组织收缩变硬变脆。胃镜小组织用绵纸包着,非常影响脱水时液体交换,非常影响脱水效果。(丁伟老师有做过实验,也在会议上做过发言的!)
在病理科赶着脱水,赶着发报告的大环境下,组织脱水过头是不容易发生的,组织固定脱水不足才是经常发生的事!
脱水的酒精不建议使用无水乙醇大循环换液模式,推荐使用梯度浓度小循环换液模式:酒精缸分三组(①65%②75%)(③85%④95%)(⑤100%⑥100%)换液时组内第一缸倒掉,第二缸的试剂可以前移变第一缸,按组内的浓度梯度更新酒精。酒精不能跨组前移。
2、酒精缸的时间要够,包了绵纸的小组织就不能当小组织,当成大组织一样处理脱水就没有问题了。
3、蜡缸的蜡要定期及时更换,包埋时组织二甲苯味道太浓,不是浸蜡缸中的蜡太久没换就是浸蜡时间不够。
4、染色不均匀的问题要在两个方面找原因:(1)可能原因脱蜡不干净、二甲苯没脱干净导致染色不均匀。冬天气温冷,溶解速度缓慢,也有可能是试剂太久没换。(2)伊红上色不均,返蓝之后水洗时间太短,返蓝液残留,组织对伊红拒染。
个人观点,仅供参考!
[ 本帖最后由 王华 于 2013-9-15 21:12 编辑 ]