shanghainese

liu-min6309：
没有看过您的片子很难断定是什么原因。不过我想很可能是固定不好，特别是大块的组织标本。如果是这样，我也想不出办法了。

xangyuu

我认为要从几个方面找原因：1、固定。如固定不好，易使细胞自溶有人有时会把配制伏尔马林溶液浓度搞错，应该是每瓶甲醛原液配5000ml伏尔马林溶液。固定时间也不能太短。2、取材及脱水。取材不能取得太厚，太厚脱水容易不充分，脱水冬天的温度不能太低，时间不能太短，最低不能少于小时/道，酒精要注意更换，别太久不换影响质量。3、脱蜡洗蜡。两道二甲苯时间不要低于2分钟/道，后面的两道无水乙醇时间也不能短，且要注意每缸试剂都要满过玻璃片。4、染色。时间要足够长，特别是素木素氧化不太好的时间要更长，必要时可试用加热。5、分化。时间不能太短，太短胞核与胞浆易模糊。6、蓝化（反蓝）。时间要足够长，最好是放在自来水中自然蓝化。7、透明和封片也是很重要的哦！

xangyuu

:em03:

xangyuu

酒精已固定送检标本，可用福尔马林重新固定一下或给医院的医生送福尔马林固定液。 :em02:

中威先生

不知道您用的是何种固定液固定?
在这里给您推荐用Bouin固定液,此液固定效果好,组织细胞结构完整,细胞核着色鲜明.
配方:饱和苦味酸水溶液:甲醛水溶液:冰醋酸=15:5:1.
如果要求固定的时间短,也可以在上液中加入80的酒精(占容积总量的60%左右)配成混合液.

王挺

一般淋巴细胞苏木素染色时间较短，固定不佳，脱蜡，分化可能存在问题。

奇刺

1、这种情况在夏季很常见，而且多见于一些小门诊手术标本直径在0.5-1cm之间，（非胃镜及子宫刮诊）我曾经认真的追究过原因，发现大多数情况是因为临床医师没有立即固定的意识。他们往往是在手术完成，缝好皮肤打好敷料以后才会送检。而小医院医生手术不熟练，有的门诊手术经常会做一到一个半小时，然后再加上缝皮，包扎的时间，有的医生还要手术做完后跟病人讲解做临床外检的必要性，开处置单，再等待病人交费后固定送检！！这样一来，在室内温度在28—30度（有空调的情况下）经过两个多小时后离体组织才得到固定。如果再加上组织含血丰富或者富含水分，固定液配置后甲醛的挥发（一般小医院手术室都是隔几天才配一次，门诊手术时间就拖得更长），浓度不够，使得有些细胞就产生毛玻璃样改变。

王建君

我曾遇到过这种状况，最后更换脱水剂，效果不错，另我现在用95%酒精及丙酮脱水脱脂，效果不错，制片中经常更换试剂是很重要的，另我们脱蜡一般采取在切片二甲苯中浸30分钟的方法，建议试用。个人体会，不一定正确，欢迎指教。

binma2

本人试100%甲醇固定30 微米的淋巴结冰冻切片，染色效果比酒精，福尔马林固定要好。
还可以用ZENKER(一种含汞的固定试剂)，对淋巴结，脾等网状内皮组织固定效果好。

王挺

我个人同意楼上的意见啊。